在动物实验中，出于取材、减少动物痛苦等需要，我们要对动物进行处死。实验动物的处死方法很多，可根据动物实验目的、实验动物品种（品系）、以及需要采集标本的部位等因素，选择不同的处死方法。无论采用哪一种方法，都应遵循安乐死的原则。安乐死是指在不影响动物实验结果的前提下，使实验动物短时间无痛苦地死亡。处死实验动物时应注意，首先要保证实验人员的安全；其次要确认实验动物已经死亡，通过对呼吸、心跳、瞳孔、神经反射等指征的观察，对死亡作出综合判断；再者要注意环保，避免污染环境，还要妥善处理好尸体。

01 颈椎脱位法

        颈椎脱位法常用于大鼠、小鼠。操作者右手抓住小鼠的尾巴，将小鼠放在实验台上，左手按住小鼠头颈部，右手用力向后上方45度拉尾，感觉动物脊柱断开，动物立即死亡。对于体重大于125g的大鼠，应结合麻醉使用。

小鼠脱颈处死

02 空气栓塞法

        该方法须结合动物麻醉来使用。常用于兔、犬、猫、豚鼠。此法是向动物静脉注入一定量的空气，使之发生栓塞而死。一般兔、猫的注入空气量为20～40ml，犬大约80～150ml。 

由兔外耳缘静脉注入空气

03 过量麻醉处死

        过量巴比妥钠（100mg/kg）处死，静脉或腹腔注射处死。

腹腔注射

04 二氧化碳吸入法

        放入动物前，先将二氧化碳灌入密闭的透明塑料箱中20～30s。关闭二氧化碳，放入动物。再将二氧化碳气体通入箱中，封住塑料箱口，1～5min（兔子需要较长时间），确定动物不动、不呼吸、瞳孔放大。停止通入二氧化碳。观察2min，以确定动物死亡。

不同日龄动物CO₂暴露时间

05 放血处死法

        此法适用于各种实验动物。具体做法是将麻醉后的实验动物股动脉、颈动脉、腹主动脉剪断或剪破、刺穿实验动物的心脏放血，导致急性大出血、休克、死亡。

06 断头处死法

        此法适用于鼠类等较小的实验动物。动物断头前，实验人员应对其进行麻醉。操作时，用左手按住实验动物的背部，拇指夹住实验动物右腋窝，食指和中指夹住左前肢，右手用剪刀在鼠颈部垂直将鼠头剪断.使实验动物因脑脊髓断离，且大量出血死亡。使用专用断头器，可以缩短动物的死亡时间，减少其痛苦。

        有关实验动物伦理学的研究日益受到重视，对实验动物实施安乐死的方法正在进一步探讨中。

        声明：本文使用图片大部分来源于网络和文献，如有侵权请联系删除。